由于多肽合物的結構及理化性質的特點，用于定性及定量分析普通有機化合物的許多常規方法均不適合對肽的分析。
 

　　例如，肽分子量在800或1000Da以上時，很難有明確的熔點;同樣，除了含4~5個以下殘基的小肽外，絕大多數肽的結構中含有大量化學環境很相似的H2N-、-CONH-及飽和C、H原子，因此元素分析的數據沒有實際意義;
 

　　同樣，紅外光譜及核磁共振譜中的1HNMR及13CNMR的數據也很難逐一歸屬。因此，多肽化合物作為藥物時一般不以上述分析數據為純度及結構確證的依據。
 

　　應該指出的是在多肽分子的立體化學分析方面，越來越多地采用旋光色散(ORD)、圓二色散(CD)及二維核磁共振譜進行分析。
 

　　它們可以深入地闡明肽鍵的二級以至三級結構。這些研究對分析肽的立體化學尤其是整體構象與生物活性之間的關系是很有意義的，但在藥品質量評審上尚不被列入標準。
 

　　詳細的肽立體化學與IR、UV、ORD及CD分析的關系已在彭師奇教授的<<多肽藥物化學>>一書均有描述，此處不再重復。下面僅就適于肽化合物質量控制的幾種必須的分析形勢予以簡介。
 

　?、?質譜(MS)分析
 

　　由于紅外、紫外及核磁共振分析對大分子量肽化合物質控中的作用不明顯，分子量檢測對肽的質量控制就顯得格外重要。因為肽鏈在一般的質譜轟擊條件下很容易斷開，很難得到完整的分子峰，所以常常用條件溫和的FAB-MS、ESI-MS……等方式進行肽化合物的質譜分析。從一張合格的MS分析圖譜上不但可以證明產物的分子量，而且也可從其他雜峰的存在與否評價主產物的純度。
 

　?、?HPLC分析
 

　　肽分析中的AAA及MS數值主要用在結構證明即定性方面。只有進行HPLC分析才能得知肽產物的具體純度。應該注意的是，主峰的保留時間(R.T.)不宜過短(如<5min)。
 

　　這種情況下，一些雜質峰(如果存在的話)可能與主峰并在一起。因此，主峰RT值適中的分離條件是質檢的合理條件。HPLC分析的另一功用是也可以定性。當合成肽為已知物(如仿制藥)，就可以與標準品進行各自注射比較及混和同注射(co-injection)比較，情況類似有機小分子的TLC分析。
 

　?、?序列分析
 

　　肽的一級結構除了各殘基的含量組成外，各殘基之間鍵合的順序是必須要加以證明的。例如下面兩個肽:H-Arg-Lys-Asp-Val-Tyr-OH……(A),H-Tyr-Arg-Val-Asp-Lys-OH……(B)它們的結構組成相同，因而AAA值及MW均一樣。(當然，他們在HPLC分析中的R.T.不同)其中A肽是具有免疫調節活性的胸腺五肽(TP5)，已廣泛用于臨床。
 

　　而B肽卻沒有什么生物活性。因此肽的序列連接情況不同，其理化性質及生物活性有很大區別。值得指出的是，從動、植物及人體分離出的肽必須進行序列分析，作為結構測定的重要依據之一。但化學合成的肽則不需要序列分析。因為合成工藝中的反應路線已經把各殘基的連接順序明確了，不可能出現上述A肽與B肽共存的情況。
 

　?、?比旋光度[α]
 

　　除了Gly殘基以外，經典肽中的每個單體中均含有手性C原子，因此每個肽化合物均有特定的[α]值。在相對分子質量為500以下的寡肽分子中一級結構為主體，因此其[α]值是必須的質量依據之一。但當肽鏈長度達八個殘基(有的文獻認為六個殘基)以上時就開始出現了二級以上的結構。
 

　　此時每個殘基中的α-C(即手性C)原子對整個分子的旋光貢獻也不是僅有的因素了。分子內的二或三級結構會給肽分子帶來新的不對稱環境，而且這些不對稱性又往往與濃度、分子間締合程度、溶劑及溫度等因素有關。例如，生長抑素十四肽(Somatostatin14)的[α]值在不同批號之間竟相差20度之多。因此，在各國的藥典及新藥質控標準中已不把[α]值作為必要的內容。
 

　?、?氨基酸組成的分析(AAA)
 

　　它可以準確地表達肽鏈殘基種類數量的構成。因為如果合成中某一步或幾步縮合不*，就可能導致殘缺肽(delation peptides)存在。
 

　　尤其是固相合成方式，這些殘缺肽不可能被及時清除，往往在終裂解后與目標肽混在一起。而且因理化性質與目標肽很接近而難以*分開。此時AAA值提供的各種氨基酸之間含量比就可以判斷出殘缺肽的存在及哪種殘基被丟失了。一般的標準為各氨基酸之間的整數比誤差在5%之內是允許的。